Синтез белкá (трансляция) происходит при точно скоординированном участии множества клеточных компонентов, а в центре всего процесса находятся рибосомы — «клеточные фабрики». Они представляют собой белковые частицы с «начинкой» из РНК; их диаметр составляет ≈25 нм, а молекулярная масса — примерно 2.5 млн. Да. Рибосомы взаимодействуют с матричной РНК (мРНК), служащей «шаблоном» для синтеза; аминоацилированными транспортными РНК (тРНК), выполняющими роль адапторов между триплетами мРНК и аминокислотными остатками; и разнообразными кофакторами, служащими для инициации синтеза, удлинения белковой цепи (элонгации) и высвобождения «новосинтезированной» молекулы с рибосомы (терминации).

Проблемой трансляции белкá занимаются сотни лабораторий по всему миру уже более половины столетия, а за исследования белоксинтезирующей машины — рибосомы — в прошлом (2009) году вручена Нобелевская премия [1]. Структура рибосомы изучена уже довольно хорошо; в подробностях исследован и механизм синтеза — «нанизывание» рибосом на линейную молекулу мРНК, распознавание нуклеотидных триплетов (кодонов), связывание тРНК, реакция синтеза пептидной связи, коррекция ошибок, терминация синтеза и роль многочисленных кофакторов во всём этом. В рибосоме найдены три основных сайта, с которыми последовательно связывается каждая тРНК — А-сайт (сюда приходит аминоацил-тРНК), P-сайт (здесь находится пептидил-тРНК с растущей белковой цепью) и E-сайт (exit, куда перемещается «отработанная» тРНК перед отсоединением от рибосомы).

Несмотря на то, что работа рибосомы изучена довольно хорошо, процесс биосинтеза белкá продолжает привлекать пристальное внимание учёных. Исследователи из Стэнфорда в сотрудничестве с японскими учёными применили методику одномолекулярных наблюдений, чтобы в ещё больших деталях проникнуть в процессы, приводящие к синтезу «молекулы жизни» [2]. (Кстати, одномолекулярные методы уже использовались, например, для изучения фолдинга отдельных молекул РНК [3].) Уникальная флуоресцентная методика позволила в реальном времени проследить за перемещением отдельных тРНК между тремя сайтами на рибосоме, а значит, и за всем процессом синтеза белкá. Важность этого достижения можно объяснить тем, что результаты измерений представляют не «усреднённую» картину по ансамблю, но отражают события, происходящие на уровне отдельной работающей рибосомы. Только такая чувствительность позволит не пропустить некоторые редкие, но очень важные для более тонкого понимания проблемы молекулярные события.

Эксперимент был основан на регистрации флуоресцентного сигнала с отдельных молекул тРНК, меченных различными флуоресцентными красителями (методика резонансной миграции энергии флуоресценции, FRET), что позволяет в реальном времени наблюдать присоединение той или иной тРНК, а, значит и «видеть» весь процесс трансляции. Всё действо проходит в чрезвычайно маленьких (можно сказать, по размеру рибосомы) резервуарах — безмодовых волноводах (рис. 1), которые получают распространение и в других «одномолекулярных» задачах (например, секвенировании одиночных молекул ДНК).

В модельных экспериментах наблюдали за синтезом пептидов длиной 4–13 аминокислотных остатков, причём концентрации тРНК и кофакторов элонгации были эквивалентны естественным (на уровне микромоль, что в десятки раз выше, чем удавалось использовать ранее). Варьирование этих концентраций пропорционально меняет скорость синтеза белкá, максимальный уровень которой — около одного кодона в секунду — достигается при физиологических значениях концентраций тРНК и фактора элонгации EF-G (рис. 2). Регистрация флуоресценции позволяет наблюдать за особенностями протекания биосинтеза: например, при отсутствии фактора EF-G трансляции не происходит, при добавлении антибиотика фусидовой кислоты блокируется диссоциация EF-G от рибосомы, а антибиотик эритромицин останавливает синтез на стадии 7 аминокислот.

Наблюдение за трансляцией на уровне отдельных молекул в реальном времени открывает новые горизонты в изучении биосинтеза белкá, механизмов его регуляции и конформационных переходов в рибосоме. Остроумная флуоресцентная технология, разработанная изначально для секвенирования одиночных молекул ДНК в пóрах [7], несомненно, найдет применение и в других передовых исследованиях — секвенировании РНК, изучении метилирования генома и определении временных характеристик различных регуляторных процессов.

При написании статьи использованы материалы рубрики «News & Views» Nature [6].

Литература

1. Белоксинтезирующая Нобелевская премия по химии (2009);
2. Sotaro Uemura, Colin Echeverría Aitken, Jonas Korlach, Benjamin A. Flusberg, Stephen W. Turner, Joseph D. Puglisi. (2010). Real-time tRNA transit on single translating ribosomes at codon resolution. Nature. 464, 1012-1017;
3. Фолдинг «воочию»;
4. Jin-Der Wen, Laura Lancaster, Courtney Hodges, Ana-Carolina Zeri, Shige H. Yoshimura, et. al.. (2008). Following translation by single ribosomes one codon at a time. Nature. 452, 598-603;
5. R. Andrew Marshall, Colin Echeverría Aitken, Magdalena Dorywalska, Joseph D. Puglisi. (2008). Translation at the Single-Molecule Level. Annu. Rev. Biochem.. 77, 177-203;
6. Susanne Brakmann. (2010). Single-molecule analysis: A ribosome in action. Nature. 464, 987-988;
7. J. Eid, A. Fehr, J. Gray, K. Luong, J. Lyle, et. al.. (2009). Real-Time DNA Sequencing from Single Polymerase Molecules. Science. 323, 133-138.